宁德市图书馆 内容
1）实验方法
a.样品溶液配制
称取适量的灭菌后的氯仿层粉末将其混悬于含10%吐温-80的生理盐水中，配制成均匀的混悬液。
b.H22小鼠肝癌实体瘤模型的建立
抽取小鼠腹水：腹腔注射连续继代3代以上的H22细胞株，选择接种后7～10天，选取肿瘤腹水长势良好的H22肝癌小鼠，颈椎脱臼处死，固定，腹部用碘酒、酒精消毒后，用5mL无菌注射器抽取小鼠腹水，计数，加入台盼蓝检测细胞存活状态，存活率应高于95%。将腹水转移至无菌的离心管中，盖紧胶盖，平衡后离心（1000r/min，5min），弃上清液，加入适量无菌生理盐水，将细胞密度调整至l×l0⁷个/mL，待用。
实体瘤接种：选取健康的ICR小鼠60只，逐个称重，随机选中50只，每只小鼠右腋下皮肤用碘酒、酒精消毒后，以1mL无菌注射器，在无菌条件下，吸取上步制备的细胞悬液0.2mL，注射于小鼠右腋皮下。全程无菌操作，40min内完成接种。
c.分组与给药
在小鼠接种瘤细胞24h后，将50只小鼠随机分成5组，每组10只，分笼饲养，每天定时灌胃给药。另设正常健康的ICR小鼠10只为正常组，各组均自由摄食与饮水，分组灌胃情况如下:①模型对照组，溶剂灌胃，每日一次。②阳性对照组，每天为其进行5-FulOmg/kg腹腔注射，每日一次。③正常组，健康ICR小鼠，溶剂灌胃，每日一次。④药物高剂量组，300mg/kg，灌胃给药，每日一次。⑤药物中剂量组，150mg/kg，灌胃给药，每日一次。⑥药物低剂量组，75mg/kg，灌胃给药，每日一次。
除正常组外，各组均连续灌胃给药10天，停药次日，称取小鼠体重，处死小鼠，用镊子镊住小鼠右腋肿瘤生长部位皮肤，用手术剪剪开皮肤，暴露肿瘤，用镊子钝性剥离肿瘤，电子天平称量瘤重，同时测量肿瘤的长径和短径，逐一记录。
d.指标检测
小鼠体重变化：比较各组小鼠在实验前和处死前体重变化情况，对其生长状况进行观测。
瘤体积：瘤体积的计算按照下列公式
瘤体积（V）=瘤长径（a）×瘤短径（b）²/2
计算各组抑瘤率：抑瘤率％=对照组平均瘤种-治疗组平均瘤种/对照组平均瘤种×100％
2）实验结果分析
a.毛花猕猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠生长的影响
体重：小鼠接种肿瘤前的体重和处理小鼠时的体重以及给药后的存活率如表5-3所示。从表中数据可知，与正常组小鼠和模型对照组小鼠相比，氯仿层处理高、中、低剂量的小鼠体重未出现明显变化，阳性对照组小鼠体重明显下降。
存活率：如表5-3中数据所示，氯仿层处理高、中、低剂量组，均有小鼠死亡，而阳性对照组、模型组、正常组小鼠均未出现死亡现象。
b.毛花猕猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠肿瘤的抑制作用
毛花狒猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠肿瘤体积影响：毛花猕猴桃根氯仿层作用于H22肝癌小鼠后，对H22肝癌小鼠体内肿瘤体积的影响如表5-4所示。低剂量组对H22肝癌小鼠的肿瘤体积有着明显的抑制作用；高、中剂量组对肿瘤体积的抑制作用不明显；阳性对照组呈现明显的抑制作用。
毛花猕猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠肿瘤抑瘤率影响：毛花猕猴桃根氯仿层作用于H22肝癌小鼠后，低剂量组对H22肝癌小鼠肿瘤有着明显的抑制作用，抑瘤率为37.34%；高、中剂量组对肿瘤的抑制作用不明显；阳性对照组对H22肝癌小鼠肿瘤有着明显的抑制作用，抑瘤率为37.17%，如表5-5所示。
p<0.05，与对照组相比。
a.样品溶液配制
称取适量的灭菌后的氯仿层粉末将其混悬于含10%吐温-80的生理盐水中，配制成均匀的混悬液。
b.H22小鼠肝癌实体瘤模型的建立
抽取小鼠腹水：腹腔注射连续继代3代以上的H22细胞株，选择接种后7～10天，选取肿瘤腹水长势良好的H22肝癌小鼠，颈椎脱臼处死，固定，腹部用碘酒、酒精消毒后，用5mL无菌注射器抽取小鼠腹水，计数，加入台盼蓝检测细胞存活状态，存活率应高于95%。将腹水转移至无菌的离心管中，盖紧胶盖，平衡后离心（1000r/min，5min），弃上清液，加入适量无菌生理盐水，将细胞密度调整至l×l0⁷个/mL，待用。
实体瘤接种：选取健康的ICR小鼠60只，逐个称重，随机选中50只，每只小鼠右腋下皮肤用碘酒、酒精消毒后，以1mL无菌注射器，在无菌条件下，吸取上步制备的细胞悬液0.2mL，注射于小鼠右腋皮下。全程无菌操作，40min内完成接种。
c.分组与给药
在小鼠接种瘤细胞24h后，将50只小鼠随机分成5组，每组10只，分笼饲养，每天定时灌胃给药。另设正常健康的ICR小鼠10只为正常组，各组均自由摄食与饮水，分组灌胃情况如下:①模型对照组，溶剂灌胃，每日一次。②阳性对照组，每天为其进行5-FulOmg/kg腹腔注射，每日一次。③正常组，健康ICR小鼠，溶剂灌胃，每日一次。④药物高剂量组，300mg/kg，灌胃给药，每日一次。⑤药物中剂量组，150mg/kg，灌胃给药，每日一次。⑥药物低剂量组，75mg/kg，灌胃给药，每日一次。
除正常组外，各组均连续灌胃给药10天，停药次日，称取小鼠体重，处死小鼠，用镊子镊住小鼠右腋肿瘤生长部位皮肤，用手术剪剪开皮肤，暴露肿瘤，用镊子钝性剥离肿瘤，电子天平称量瘤重，同时测量肿瘤的长径和短径，逐一记录。
d.指标检测
小鼠体重变化：比较各组小鼠在实验前和处死前体重变化情况，对其生长状况进行观测。
瘤体积：瘤体积的计算按照下列公式
瘤体积（V）=瘤长径（a）×瘤短径（b）²/2
计算各组抑瘤率：抑瘤率％=对照组平均瘤种-治疗组平均瘤种/对照组平均瘤种×100％
2）实验结果分析
a.毛花猕猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠生长的影响
体重：小鼠接种肿瘤前的体重和处理小鼠时的体重以及给药后的存活率如表5-3所示。从表中数据可知，与正常组小鼠和模型对照组小鼠相比，氯仿层处理高、中、低剂量的小鼠体重未出现明显变化，阳性对照组小鼠体重明显下降。
存活率：如表5-3中数据所示，氯仿层处理高、中、低剂量组，均有小鼠死亡，而阳性对照组、模型组、正常组小鼠均未出现死亡现象。
b.毛花猕猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠肿瘤的抑制作用
毛花狒猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠肿瘤体积影响：毛花猕猴桃根氯仿层作用于H22肝癌小鼠后，对H22肝癌小鼠体内肿瘤体积的影响如表5-4所示。低剂量组对H22肝癌小鼠的肿瘤体积有着明显的抑制作用；高、中剂量组对肿瘤体积的抑制作用不明显；阳性对照组呈现明显的抑制作用。
毛花猕猴桃根氯仿层对H22肝癌小鼠肿瘤抑瘤率影响：毛花猕猴桃根氯仿层作用于H22肝癌小鼠后，低剂量组对H22肝癌小鼠肿瘤有着明显的抑制作用，抑瘤率为37.34%；高、中剂量组对肿瘤的抑制作用不明显；阳性对照组对H22肝癌小鼠肿瘤有着明显的抑制作用，抑瘤率为37.17%，如表5-5所示。
p<0.05，与对照组相比。
